制作組胚病理切片保持材料的清潔:組織塊上如有血液、污物、粘液、食物、糞便等，可用水沖洗干凈后再放入固定液中。 保持組織的原有形態(tài):新鮮組織固定后，或多或少會產生收縮現象，有時甚至完全變形。為此可將組織展平，以盡可能維持原形。 制作病理切片固定 (1)小塊組織固定法:這是相當常用的方法，從人體或動物體取下的小塊組織，須立即置入液態(tài)固定劑中進行固定，通常，標本與固定液的比例為1:4~20，但組織塊不宜過大過厚，否則固定液不能迅速滲透。故取組織塊的大小一般為2.0cm×2.0cm×0.3cm。 (2)注射、灌注固定法:某些組織塊由于體積過大或固定液極難滲入內部，或需要對整個臟器或整個動物體進行固定。這時宜采用注射固定或灌注固定法。將固定液注入血管，經血管分支到達整個組織和全身，從而得到充分的固定。 (3)蒸汽固定法:比較小而厚的標本，可采用鋨酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，則應在血片未干燥前采用鋨酸或甲醛蒸汽接觸固定。 相當常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。新鄉(xiāng)病理切片招商

制作病理切片染色和封片 常用的染色方法是蘇木素-伊紅(Hematoxylin-Eosin)染色法，簡稱H.E染色法。這種方法對任何固定液固定的組織和應用各種包埋法的切片均可使用。蘇木素是一種堿性染料,可使組織中的嗜堿性物質染成藍色，如細胞核中的染色質等;伊紅是一種酸性染料，可使組織中的嗜酸性物質染成紅色，如多數細胞的胞質、核仁等在H.E染色的切片中均呈紅色。 H.E染色程序如下:脫蠟、脫苯、復水、染色、脫水、透明、封固 常規(guī)蘇木素染色中的對比染色是用伊紅,近年來在英、美家的一些實驗室則采用焰紅(phloxine),此外也有用桔黃G(OrangeG)、比布里希猩紅(Biebrich scarlet)、波爾多紅(Bordeaux red)等作為對比染色。伊紅為染胞質、膠原纖維、肌纖維、嗜酸性顆粒等常用的染料。新鄉(xiāng)病理切片招商

病理切片的制作需要取一定大小的病變組織，用病理組織學方法制成病理切片〔通常將病變組織包埋在石蠟塊里，用切片機切成薄片，再用蘇木精-伊紅(H-E)染色〕,用顯微鏡進一步檢查病變。 病變的發(fā)展過程，***作出病理診斷。 病理切片的制作 1.制作病理切片取材 (1)材料新鮮:取材組織愈新鮮愈好，人體組織一般在離體后，動物組織在處死后迅速固定，以保證原有的形態(tài)學結構。 (2)組織塊的大小:所取組織塊較理想的體積為2.0cm×2.0cm×0.3cm，以使固定液能迅速而均勻地滲入組織內部，但根據制片材料和目的不同，組織塊的較理想體積也不同，如制作病理外檢、科研切片，其組織塊可以薄取0.1~0.2cm即可，這樣可以縮短固定脫水透明的時間，若制作教學切片厚取0.3 ~0.5cm，這樣可以同一蠟塊制作出較多的教學切片。

病理切片制作時將部分有病變的組織或臟器經過各種化學品和埋藏法的處理，使之固定硬化，在切片機上切成薄片，粘附在玻片上，染以各種顏色，供在顯微鏡下檢查，以觀察病理變化，作出病理診斷。 病理切片操作規(guī)范： 一、巨檢結束后點清塊數，記錄簽收。 二、組織包埋完成后進行清點蠟塊數量。 三、大標本固定時間不得少于6小時；小標本不得少于3小時。 四、固定液必須及時更換，固定后必須流水沖洗。 五、固定、脫水溫度不得高于37℃。 六、包埋用石蠟必須過濾。 七、試劑必須及時更換。 八、切片刀必須鋒利，用力均勻，切片厚度3—5微米。切片完整無污染，無皺褶。 九、胃鏡、穿刺等小活檢組織切片必須作連續(xù)性切片，數量不得少于8張。 十、組織片貼附，應在除去標簽位置后玻片的中間。 十一、封固前必須經酒精充分脫水，二甲苯透明，濕封。 十二、封片時不得有氣泡，不得有樹膠外溢。 十三、標簽必須貼于玻片左側，編號字跡必須清楚。 十四、取材后的制片工作一般應在2個工作日內完成。 十五、切片完成后交付醫(yī)師時必須按照記錄當面清點

制作病理切片脫水透明 標本經過固定和沖洗后，組織中含有較多的水分，必須將組織塊內的水分置換出來，這一過程叫做脫水。無論是用石蠟切片，還是用火棉膠切片，都必須除去組織中所含水分，因含水組織與石蠟、火棉膠等包埋材料不相容，常用的脫水劑為一系列不同濃度的乙醇。 脫水的步驟是:80%、90%、95%各種濃度乙醇2小時，此過程可用脫水機自控完成。 **也是一種脫水能力很強的脫水劑，但因其脫水能力很強，對組織有劇烈收縮作用，在制作科研、教學切片時一般不用該試劑。因乙醇、**等不溶于石蠟，還要經過一個能溶于石蠟的溶劑替代過程稱為透明。常用的透明劑有二甲苯、三氯甲烷、水楊酸甲酯等。新鄉(xiāng)病理切片招商

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