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珠海組織RT-PCR檢測技術(shù)原理及步驟

來源: 發(fā)布時(shí)間:2023-07-28

實(shí)時(shí)定量PCR的系統(tǒng)構(gòu)成及工作原理:熒光定量檢測系統(tǒng)由實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀,實(shí)時(shí)熒光定量試劑,通用電腦,自動分析軟件等構(gòu)成。設(shè)備由熒光定量系統(tǒng)和計(jì)算機(jī)組成,用來監(jiān)測循環(huán)過程的熒光。與實(shí)時(shí)設(shè)備相連的計(jì)算機(jī)收集熒光數(shù)據(jù)。數(shù)據(jù)通過開發(fā)的實(shí)時(shí)分析軟件以圖表的形式顯示。原始數(shù)據(jù)被繪制成熒光強(qiáng)度相對于循環(huán)數(shù)的圖表。原始數(shù)據(jù)收集后可以開始分析。實(shí)時(shí)設(shè)備的軟件能使收集到的數(shù)據(jù)進(jìn)行正?;幚韥韽浹a(bǔ)背景熒光的差異。正常化后可以設(shè)定域值水平,這就是分析熒光數(shù)據(jù)的水平。實(shí)時(shí)定量PCR通用電腦,自動分析軟件等構(gòu)成。珠海組織RT-PCR檢測技術(shù)原理及步驟

珠海組織RT-PCR檢測技術(shù)原理及步驟,Real-timePCR技術(shù)服務(wù)

Real-time PCR鏈?zhǔn)椒磻?yīng):每次循環(huán)都得加入新的DNA聚合酶,不但操作煩瑣,而且價(jià)格昂貴,制約了PCR技術(shù)的應(yīng)用和發(fā)展。耐熱DNA聚合酶-Taq酶的發(fā)現(xiàn)對于PCR的應(yīng)用有里程碑的意義,該酶可以耐受90℃以上的高溫而不失活,不需要每個循環(huán)加酶,使PCR技術(shù)變得非常簡捷、同時(shí)也降低了成本,PCR技術(shù)得以大量應(yīng)用,并逐步應(yīng)用于臨床。多重連接依賴探針擴(kuò)增允許用單個引物對擴(kuò)增多個靶標(biāo),從而避免多重PCR的分辨率限制。引物的設(shè)計(jì)注意事項(xiàng):1,注意引物設(shè)計(jì)好后的產(chǎn)物長度。Real-time PCR的較佳產(chǎn)物長度在150-250kb左右(書上說這樣可以增加熒光的敏感度,減少實(shí)驗(yàn)誤差,但是我對這個說法持懷疑態(tài)度。產(chǎn)物長度越大,SYBR嵌入的越多,這樣才能夠保證之后的熒光值比較可信)。2,不同的管家基因擴(kuò)增效率不同。所以在做整個實(shí)驗(yàn)之前應(yīng)該做一次檢測擴(kuò)增效率的實(shí)驗(yàn)。如果擴(kuò)增效率相差太大,就不能使用delt,deltCt法來比較基因表達(dá)量的高低。蘇州實(shí)時(shí)PCR檢測技術(shù)原理PCR擴(kuò)增時(shí)在加入一對引物的同時(shí)加入一個特異性的螢光探針。

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Real-time PCR相對定量中的標(biāo)準(zhǔn)曲線法如何進(jìn)行:主要是相對定量標(biāo)準(zhǔn)品的制作,一般有三種方法:1、比較復(fù)雜的方法:質(zhì)粒,采用Biotnt提供內(nèi)參基因的特異性Real-time PCRmRNA引物,對目的基因進(jìn)行Real-time PCR實(shí)驗(yàn),得到PCR擴(kuò)增產(chǎn)物;PCR擴(kuò)增產(chǎn)物轉(zhuǎn)入質(zhì)粒中,得到相對定量的標(biāo)準(zhǔn)品;2、一般采用的方法1:比較強(qiáng)的CDNA模板,3、一般采用的方法:PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,如果在方法2中找不到比較強(qiáng)的CDNA模板,則選用PCR產(chǎn)物作為相對定量的標(biāo)準(zhǔn)品也是可以的;需要注意的事項(xiàng)是:PCR產(chǎn)物濃度很高,而Real-time PCR的產(chǎn)物片段比較短,容易在稀釋的過程中造成PCR污染,要注意操作。

Real-time PCR鏈反應(yīng)注意事項(xiàng):在實(shí)驗(yàn)過程中要防止RNA的降解,保持RNA的完整性。在總RNA的提取過程中,注意避免mRNA的斷裂;為了防止非特異性擴(kuò)增,必須設(shè)陰性對照;內(nèi)參的設(shè)定:主要為了用于靶RNA的定量。常用的內(nèi)參有G3PD(甘油醛-3-磷酸脫氫酶)、β-Actin(β-肌動蛋白)等。其目的在于避免RNA定量誤差、加樣誤差以及各PCR反應(yīng)體系中擴(kuò)增效率不均一各孔間的溫度差等所造成的誤差;PCR不能進(jìn)入平臺期,出現(xiàn)平臺效應(yīng)與所擴(kuò)增的目的基因的長度、序列、二級結(jié)構(gòu)以及目標(biāo)DNA起始的數(shù)量有關(guān)。故對于每一個目標(biāo)序列出現(xiàn)平臺效應(yīng)的循環(huán)數(shù),均應(yīng)通過單獨(dú)實(shí)驗(yàn)來確定;防止DNA的污染:采用DNA酶處理RNA;在可能的情況下,將PCR引物置于基因的不同外顯子,以消除基因和mRNA的共線性。基于探針的化學(xué)法,Real-time PCR應(yīng)用一個或多個熒光標(biāo)記的寡核苷酸探針檢測PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。

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為了便于對所檢測樣本進(jìn)行比較,在real-timeQ-PCR反應(yīng)的指數(shù)期,首先需設(shè)定一定熒光信號的域值,一般這個域值(threshold)是以PCR反應(yīng)的前15個循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號(baseline),熒光域值的缺省設(shè)置是3~15個循環(huán)的熒光信號的標(biāo)準(zhǔn)偏差的10倍。如果檢測到熒光信號超過域值被認(rèn)為是真正的信號,它可用于定義樣本的域值循環(huán)數(shù)(Ct)。Ct值的含義是:每個反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號達(dá)到設(shè)定的域值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。研究表明,每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,起始拷貝數(shù)越多,Ct值越小。利用已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線,因此只要獲得未知樣品的Ct值,即可從標(biāo)準(zhǔn)曲線上計(jì)算出該樣品的起始拷貝數(shù)。Real-time PCR從用途上分可以分為定性分析和定量分析。連云港分子生物學(xué)RT-PCR檢測技術(shù)原理

Real-time PCR的基本目標(biāo)是精確測量和鑒別非常微量的特異性核酸。珠海組織RT-PCR檢測技術(shù)原理及步驟

實(shí)時(shí)熒光定量PCR:實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)有效地解決了傳統(tǒng)定量只能終點(diǎn)檢測的局限,實(shí)現(xiàn)了每一輪循環(huán)均檢測一次熒光信號的強(qiáng)度,并記錄在電腦軟件之中,通過對每個樣品Ct值的計(jì)算,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線獲得定量結(jié)果。因此,實(shí)時(shí)熒光定量PCR無需內(nèi)標(biāo)是建立在兩個基礎(chǔ)之上的:Ct值的重現(xiàn)性PCR循環(huán)在到達(dá)Ct值所在的循環(huán)數(shù)時(shí),剛剛進(jìn)入真正的指數(shù)擴(kuò)增期(對數(shù)期),此時(shí)微小誤差尚未放大,因此Ct值的重現(xiàn)性極好,即同一模板不同時(shí)間擴(kuò)增或同一時(shí)間不同管內(nèi)擴(kuò)增,得到的Ct值是恒定的。珠海組織RT-PCR檢測技術(shù)原理及步驟

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